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可視化細胞趨化實驗|HUVEC在μ-Slide趨化載玻片中的3D免疫熒光染色

date:2023-10-30 15:42:02

   這是在µ-Slide Chemotaxis細胞趨化載玻片中進行3D趨化性實驗后,對嵌入Matrigel®中的HUVEC(人臍靜脈內皮細胞)進行免疫熒光染色的詳細實驗方案。在Matrigel®中,趨化性細胞向10%FCS遷移之后,通過免疫細胞化學染色研究了定向細胞遷移的形態學特征。

  

  01、實驗材料準備

  

1.jpg

  

3-1.png

  

  µ-Slide Chemotaxis

  

  02、實驗步驟

  

  將HUVEC接種在50%Matrigel®中,并填充至µ-Slide Chemotaxis中,然后將其沿10%FCS梯度遷移24小時。采用免疫染色法觀察內皮細胞在Matrigel®中定向遷移后的形態學特征。HUVEC的染色是直接在µ-Slide細胞趨化載玻片中進行的。在染色方案的所有步驟中,將60 µl的相應溶液分別添加到兩個大儲液池中。在孵育過程中,所有塞子均保持關閉狀態,以免干擾通過觀察通道的擴散。除非另有說明,否則所有步驟均在室溫下進行。

  

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  1) 從一邊儲液池中取出塞子,然后吸出培養基。在抽吸和沖洗步驟中,將塞子留在中央通道中。

  

  2) 用1x PBS洗滌→3x 10分鐘

  

  3) 用4%多聚甲醛固定細胞和基質蛋白→1x 40分鐘

  

  4) 用1x PBS洗滌→2x 10分鐘

  

  5) 用0.2%Triton X-100 / PBS透化細胞→1x 20分鐘

  

  6) 用1x PBS洗滌→6x 10分鐘

  

  7) 用1% BSA/PBS阻斷非特異性抗原→過夜

  

  8) 用1x PBS洗滌→6x 10分鐘

  

  9) 添加一抗:單克隆抗VE鈣黏著蛋白,小鼠(在1%BSA / PBS中為1:100)→在4°C下1x 24小時

  

  10) 用1x PBS洗滌→6x 10分鐘

  

  11) 添加二抗:山羊抗小鼠IgG(H + L),Alexa Fluor 680(在1%BSA / PBS中為1:50)→在4°C過夜

  

  12) 用1x PBS洗滌→6x 10分鐘

  

  13) 加入染色混合物→1x 40分鐘

  

  i) 羅丹明phalloidin染色肌動蛋白絲(PBS中1:400)

  

  ii) Hoechst 33342對細胞核染色(1:100,PBS中0.5 µg/ml)

  

  14) 用1x PBS洗滌→6x 10分鐘

  

  15) 將最后的PBS留在儲液罐中并開始成像。

  

  免疫熒光圖像由LeicaSP8SMD共聚焦激光掃描顯微鏡獲得,配以63xHCPLAPO1.2NA水物鏡。用405nm紫外激光激發Hoechst 33342,594nmHeNe激光激發羅丹明-phalloidin,638nmHeNe激光激發AlexaFluor680。

  

  重要提示:與標準染色方案相比,洗滌和染色步驟所需的培養時間更長。這是為了確保抗體通過凝膠充分擴散。

  

  03、實驗結果

  

  HUVEC在Matrigel®基質中的免疫染色顯示,相鄰的細胞組優先形成細胞簇并作為集合體遷移。少數細胞呈單細胞遷移。

  

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  圖1:顯示HUVEC在50%Matrigel®中的多細胞趨化性的細胞簇。固定后,對細胞進行細胞核(藍色)、F-肌動蛋白(紅色)和VE鈣粘蛋白(青色)染色。白色箭頭表示VE介導的細胞-細胞接觸。

  

  當細胞作為個體遷移時,細胞體被拉長,呈間充質梭形。細胞呈前后極性,前緣呈小片狀,向梯度方向有突起。

  

  當以多細胞單元組織時,細胞團簇表現出明顯的前后不對稱的群極化(圖1)。在這里,一個或幾個前導細胞參與了前緣的形成,前緣表現出細長的突起或寬的片層。遷移復合體較深區域的連續細胞沒有極化。然而,這些細胞特征性地保留了VE鈣粘蛋白介導的細胞-細胞接觸(圖1)。

  

  04、訂購信息

  

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